蛋白质的肽修饰:泛素化、苏木化和NEDD化(一)
蛋白质的修饰有多种类型,除了常见的无机和有机小分子修饰,如磷酸化、糖基化、脂酰化等,还有一类用小肽进行修饰的,例如泛素化(ubiquitination)、苏木化(SUMOylation)、NEDD化(neddylation)等。
泛素(ubiquitin)一词来源于它在真核生物中普遍表达。泛素最初是在胸腺中发现的,被认为广泛参与T细胞和B细胞的分化,所以Goldstein等将其命名为UBIP(ubiquitous immunopoietic polypeptide)。
泛素修饰最主要的生化功能就是实现蛋白质的选择性降解。需要降解的蛋白被专门的酶(泛素连接酶)识别并与泛素连接,然后带有泛素标记的蛋白被蛋白酶体降解。
这一功能的发现可以追溯到1953年,Simpson 发现ATP可以促进细胞中的蛋白质降解。因为一般的蛋白酶并不需要ATP,所以这一发现有些“不合理”,并未引起重视。直到1977年,Goldberg等报道,在网织红细胞的提取液中加入ATP显著促进蛋白质的分解。
网织红细胞是红细胞分化过程中的最后一个中间体,其细胞核已经排出。在向成熟红细胞转化的过程中,许多蛋白已经不再需要,因而被快速降解。所以网织红细胞非常适合蛋白质降解的研究,后来的许多重要发现都是在网织红细胞中做出的。
1977年,Goldknopf等发现泛素可以与组蛋白2A通过异肽键连接。1979年,Hershko等发现网织红细胞中的某种成分可以促进ATP依赖的蛋白质降解,后来从中纯化出一种小分子蛋白,命名为ATP-dependent proteolysis factor(APF-1),1980年发现它就是泛素。
Hershko等提出了泛素假说:泛素通过E1(泛素激活酶)、E2(泛素结合酶)、E3(泛素连接酶)的多级反应,与目标蛋白共价结合,形成聚泛素链,作为蛋白水解酶攻击的标记,从而使目标蛋白迅速分解。1987年,Hough等从网织红细胞中纯化出能够降解多聚泛素-蛋白偶联物的蛋白酶体,完善了泛素-蛋白酶体系统学说。
泛素-蛋白酶体系统(UPS)可以用来控制特定蛋白质的寿命,从而调节多种细胞功能,如细胞分裂、DNA修复、免疫防御等。所以2004年诺贝尔化学奖被授予以色列理工学院的亚伦·西查诺弗(Aaron Ciechanover)和阿夫拉姆·赫什科(Avram Hershko),以及美国加州大学的欧文·罗斯(Irwin Rose),即1979年那篇论文的三位作者。
泛素与底物的结合是通过由E1、E2和E3催化的多步反应进行的。E1利用ATP水解产生的能量,使自身催化位点半胱氨酸的巯基与泛素的羧基之间产生硫酯键。然后,活化的泛素被转移至E2的巯基上。最后,由E3将泛素转移到特定的底物上。
泛素化的特异性由E3决定,所以E3有很多种,各自负责不同类型的蛋白。当某一类蛋白需要加快降解时,相应的E3会被特定通路激活,从而将那些蛋白泛素化,通过蛋白酶体降解。据统计,人类有两个E1基因UBA1和UBA6,约五十个E2基因和700多种E3基因。
E3泛素连接酶分为三个家族:HECT型,RING型和RBR型。HECT型包含HECT(homologous to the E6-AP carboxyl terminus)结构域,该结构域通过一个半胱氨酸巯基接受来自E2的活性泛素,形成E3-泛素中间体。RING型含有C3HC4结构的RING(Really Interesting New Gene)结构域,不生成E3-Ub中间体,而是直接将泛素从E2转移至底物。
RBR(RING-between-RING)型含有两个 RING域(RING1和RING2)和一个RING间(In-Between RING,IBR)结构域。RING2在功能上类似于HECT域,包含一个保守的催化半胱氨酸,可接受活性泛素形成E3-Ub中间体。RING1负责募集E2并转移泛素至RING2。
泛素化是一种可逆修饰,逆反应由去泛素化酶(Deubiquitinating enzyme,DUB)催化。DUB不仅用于解除泛素化修饰,还参与泛素的成熟、编辑与回收,从而维持泛素系统的平衡。
DUB还与感染过程相关,许多病原体攻击宿主细胞泛素系统以利于自己的生存和增殖。例如,先天免疫系统对于抵抗病毒侵袭具有重要作用,而其活性受到泛素化调控。腺病毒、疱疹病毒、冠状病毒等可以编码DUB,抑制干扰素和促炎细胞因子的表达,降低先天免疫系统活性。
参考文献:
1. Goldstein G., et al. Isolation of a polypeptide that has lymphocyte differentiating properties and is probably represented universally in living cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1975;72:11–15.
2. I L Goldknopf, et al. Isopeptide linkage between nonhistone and histone 2A polypeptides of chromosomal conjugate-protein A24. Proc Natl Acad Sci U S A. 1977 Mar; 74(3): 864–868.
3. A Hershko, A Ciechanover, and I A Rose. Resolution of the ATP-dependent proteolytic system from reticulocytes: a component that interacts with ATP. Proc Natl Acad Sci U S A. 1979 Jul; 76(7): 3107–3110.
4. R Hough, et al. Purification of two high molecular weight proteases from rabbit reticulocyte lysate. J Biol Chem. 1987 Jun 15;262(17):8303-13.
5. Domarin Khago, et al. The Role of Conformational Dynamics in the Recognition and Regulation of Ubiquitination. Molecules. 2020 Dec; 25(24): 5933.
6. Ben A. Bailey-Elkin, et al. Structure and Function of Viral Deubiquitinating Enzymes. J Mol Biol. 2017 Nov 10; 429(22): 3441–3470.