MPB：南农金巍等-瘤胃甲烷菌的分离培养与保存
为进一步提高《微生物组实验手册》稿件质量，本项目新增大众评审环节。文章在通过同行评审后，采用公众号推送方式分享全文，任何人均可在线提交修改意见。公众号格式显示略有问题，建议电脑端点击文末阅读原文下载PDF审稿。在线文档(https://kdocs.cn/l/cL8RRqHIL)大众评审页面登记姓名、单位和行号索引的修改建议。修改意见的征集截止时间为推文发布后的72小时，文章将会结合有建设性的修改意见进一步修改后获得DOI在线发表，同时根据贡献程度列为审稿人或致谢。感谢广大同行提出宝贵意见。
瘤胃甲烷菌的分离培养与保存
Isolation and Preservation of Rumen Methanogens
金巍*，成艳芬，毛胜勇，朱伟云
消化道微生物研究室，动物科技学院，南京农业大学，南京，江苏
*通讯作者邮箱：jinwei@njau.edu.cn
摘要：反刍动物瘤胃是一个半开放的厌氧发酵系统。瘤胃中栖息着大量的甲烷菌，这些甲烷菌对氧极为敏感，需要严格的厌氧环境才能够生长。目前已获得的瘤胃甲烷菌纯菌株还很少。瘤胃甲烷菌主要归属于Methanobacteriales和Methanomassiliicoccales两个目。Methanobacteriales目的甲烷菌主要利用氢气、二氧化碳、甲酸以及甲醇等生成甲烷；Methanomassiliicoccales目甲烷菌主要利用氢气、甲醇和甲胺等生成甲烷。本文描述了瘤胃中主要甲烷菌的分离培养和保存方法。
关键词：甲烷菌，瘤胃，分离培养，保存
材料与试剂
1.二甲亚砜
2.甘油
3.甲醇
4.一甲胺盐酸盐
5.二甲胺盐酸盐
6.三甲胺盐酸盐
7.高纯氢气
8.高纯氮气
9.高纯二氧化碳
10.新鲜瘤胃内容物
11.无细胞瘤胃液 (将新鲜瘤胃液10,000 × g，4 °C离心15 min，取上清)
12.酵母膏
13.胰蛋白胨
14.碳酸氢钠
15.刃天青
16.辅酶M
17.去离子水
18.九水硫化钠
19.半胱氨酸盐酸盐
20.氢氧化钠
21.青霉素钾
22.硫酸链霉素
23.林可霉素
24.万古霉素
25.琼脂粉
26.氯化钠
27.磷酸氢二钾
28.硫酸铵
29.二水氯化钙
30.氯化钙
31.七水硫酸镁
32.一水硫酸镁
33.一水硫酸锰
34.三水磷酸氢二钾
35.七水硫酸亚铁
36.六水氯化钴
37.七水硫酸锌
38.五水硫酸铜
39.十二水硫酸钾铝
40.硼酸
41.二水钼酸钠
42.六水硫酸镍
43.硒酸钠
44.二水钨酸钠
45.乙酸
46.丙酸
47.丁酸
48.2-甲基丁酸
49.异丁酸
50.戊酸
51.异戊酸
52.盐酸吡哆醇
53.维生素C
54.泛酸钙
55.硫辛酸
56.烟酰胺
57.烟酸
58.对氨基苯甲酸
59.盐酸吡哆醛
60.核黄素
61.盐酸硫胺素
62.生物素
63.叶酸
64.氰钴胺
65.溶液A (见溶液配方)
66.溶液B (见溶液配方)
67.厌氧稀释液 (见溶液配方)
68.还原剂 (见溶液配方)
69.维生素 (见溶液配方)
70.微量元素 (见溶液配方)
71.抗生素 (见溶液配方)
72.二甲亚砜 (见溶液配方)
73.甘油 (见溶液配方)
74.辅酶M (见溶液配方)
75.脂肪酸溶液 (见溶液配方)
76.底物 (见溶液配方)
77.培养基 (见溶液配方)
78.琼脂培养基 (见溶液配方)
仪器设备
1.亨氏管 (Bellco glass, Inc., NJ, USA)
2.异丁烯塞 (Bellco glass, Inc., NJ, USA)
3.10 ml青霉素瓶
4.青霉素瓶铝盖
5.压盖器
6.厌氧手套箱
7.培养箱
8.微波炉
9.高压瓶 (500 ml蓝口瓶)
10.磁力搅拌器
11.超低温冰箱
12.高压灭菌锅
13.水浴锅
14.气相色谱仪
15.荧光显微镜
实验步骤
本文中的厌氧操作步骤和培养技术源于Hungate (1969)，同时参照了Joblin (2005) 和Whitman等 (2006) 描述的方法。
菌的分离：
1.通过充二氧化碳对500 ml高压瓶除氧，取约50 g瘤胃内容物快速放入瓶中，再加入150 ml已预热的培养基，盖上瓶盖，用手用力摇晃30s~60s。
2.为了防止堵塞移液管口，用在火焰上灼烧过的剪子，剪去移液管尖头。在通二氧化碳的条件下（或者在厌氧手套箱中操作），取5 ml瘤胃内容物匀浆液，加入到含有45 ml培养基的血清瓶中，手摇混合均匀（10倍稀释）。取5 ml混合液，加入到新的含有45 ml培养基的血清瓶中，手摇混合均匀，重复此稀释步骤，连续梯度稀释到10-11。
3.将装有1.5%琼脂培养基的厌氧亨氏管在沸水中融化，42 °C水浴10 min。将1ml无菌注射器在氮气或二氧化碳瓶中润洗几次（后续步骤中的注射器在使用前均需经过此步骤处理），然后分别吸取0.1 ml维生素溶液和0.1 ml青霉素/链霉素溶液，注入准备好的琼脂亨氏管。
4.用无菌注射器吸取10-6~10-11稀释梯度的菌液0.5 ml，注入琼脂管中，小心混合均匀 (避免气泡产生)，在冰板或冷水盘中快速滚动管子，让融化的琼脂均匀地凝固在管壁上。
5.充气体底物(气体组成和压力详见12.底物部分)，39 °C垂直静置培养2~4个星期。
6.在解剖显微镜下观察(或者肉眼观察)并定位独立菌落 (注意不要让管底凝结的水污染菌落)。从菌落数小于30的管子中挑取独立的菌落，转移到装有10 ml液体培养基的亨氏管中。如果管中出现煎蛋型菌落污染 (支原体)，可在液体培养基中加入0.1 ml林可霉素或万古霉素。
注：挑取菌落要在通二氧化碳的条件下进行或者在厌氧手套箱中操作。
7.充气体底物，39 °C轻柔震荡培养2~3个星期。
8.用气相色谱检测亨氏管中气体是否有甲烷生成。
9.选取有甲烷产生的亨氏管，对管中的菌液进行梯度稀释，重复3~8步骤。
10.用荧光显微镜和相差显微镜检查确认获得的甲烷菌菌液的纯度。在420nm激发光下，观察菌体是否有甲烷菌的特征性荧光蓝绿光激发；用相差显微镜直接观察菌液中菌体形态的一致性，也可革兰氏染色后观察。
注：最近的研究发现Methanomassiliicoccales目中的甲烷菌在420nm激发光下无甲烷菌特征性荧光激发。
菌的鉴别：
11.提取菌液DNA，用甲烷菌通用引物86F/1340R扩增16S rRNA基因 (Wright等，2004)，克隆测序，在NCBI数据库上进行比对，对获得的菌株进行分类鉴定。
12.利用培养的方法确定菌株的表型特性，如最适生长pH、最适生长温度以及底物特异性等。
菌的保存：
13.在菌处于对数生长期时，用无菌注射器在亨氏管中注入二甲亚砜溶液（终浓度为5%），手摇混合均匀，充入气体底物，在4 °C静置2 h，然后转移至-80 °C冻存。也可将菌液与50%甘油溶液等体积混合，-80 °C冻存。也可以在-80 °C过夜后，转移至液氮中长期保存(在液氮中保存需将亨氏管换成冻存管)。
注：不同种属甲烷菌的保存方法可能有所差异（包括保存温度、冻存剂的种类和浓度等），保存后要验证是否能够复活。
菌的复活：
14.取出冻存管或亨氏管，置于温水浴中快速融化(39°C)。菌液融化后，用无菌注射器吸取0.1~0.3 ml菌液，注入到含有10ml液体培养基的亨氏管中，充气体甲烷菌底物，39 °C轻柔震荡培养2周，检测是否有甲烷产生。
溶液配方
1.溶液A
氯化钠 6.0 g
磷酸二氢钾 3.0 g
硫酸铵 1.5 g
二水氯化钙 0.79 g
七水硫酸镁 1.2 g
溶于去离子水中，定容到1 L，4 °C保存
2.溶液B
三水磷酸氢二钾 (7.86 g) 溶于去离子水中，定容到1L，4 °C保存
3.厌氧稀释液
将85 ml溶液A，85 ml溶液B，2.5 g 碳酸氢钠，0.5 ml刃天青溶液 (0.1% w/v)，330 ml去离子水混合于500 ml高压瓶中，置于微波炉中煮沸2 min，然后迅速通入二氧化碳 (1.5h~2h)，冷却至室温，添加0.25 g半胱氨酸盐酸盐，手摇混合均匀，盖紧瓶盖，转移至厌氧手套箱中分装(或者在通二氧化碳条件下分装)，每支亨氏管分装9 ml，盖上塞子，高压灭菌 (121 °C，15 min)。
注：在煮沸和通二氧化碳过程中会有水分蒸发损失，加去离子水时可多加20 ml。
4.还原剂
将2.5 g半胱氨酸盐酸盐溶解于50 ml去离子水中，用氢氧化钠溶液调节pH至10，然后加去离子水至200 ml，煮沸，通氮气，加2.5 g 九水硫化钠，手摇混合均匀，冷却 (可冰浴)。在通氮气条件下，每支亨氏管分装10 ml溶液。加塞，高压灭菌 (121 °C，15 min)，室温储存。
5.维生素溶液
1)将1,000 ml去离子水煮沸2 min，通二氧化碳冷却
2)将下列维生素分别溶解于已除氧的去离子水中：
盐酸吡哆醇 (10.0 mg)
维生素C (5.0 mg)
泛酸钙 (5.0 mg)
硫辛酸 (5.0 mg)
烟酰胺 (5.0 mg)
烟酸 (5.0 mg)
对氨基苯甲酸 (5.0 mg)
盐酸吡哆醛 (5.0 mg)
核黄素 (5.0 mg)
盐酸硫胺素 (5.0 mg)
生物素 (2.0 mg)
叶酸 (2.0 mg)
氰钴胺 (0.1 mg)
3)在厌氧手套箱中将维生素溶液通过0.22 µm无菌滤器过滤进入已灭菌的厌氧亨氏管，每支亨氏管分装滤液10 ml，分装完毕后每支亨氏管用无菌注射器添加0.1 ml还原剂，4 °C避光保存。亨氏管在使用前通二氧化碳除氧，高压灭菌处理。接种前每10 ml培养基添加0.1 ml已过滤除菌的维生素溶液。
6.微量元素溶液
将1.5 g次氮基三乙酸溶于500 ml去离子水中，用氢氧化钾调节pH至6.5，加去离子水至1 L。分别添加：
一水硫酸镁 (3 g)
一水硫酸锰 (0.5 g)
氯化钠 (1 g)
七水硫酸亚铁 (0.1 g)
六水氯化钴 (0.1 g)
氯化钙 (0.1 g)
七水硫酸锌 (0.1 g)
五水硫酸铜 (10 mg)
十二水硫酸铝钾 (10 mg)
硼酸 (10 mg)
二水钼酸钠 (10 mg)
六水硫酸镍 (30 mg)
硒酸钠 (20 mg)
二水钨酸钠 (20 mg)
混合均匀，4 °C避光保存
7.抗生素
1)青霉素/链霉素
在厌氧手套箱中将1 g青霉素钾 (160万单位) 和2 g硫酸链霉素 (200万单位) 溶解于10 ml厌氧稀释液中，用0.22 µm无菌滤器过滤进入经除氧和灭菌处理的亨氏管，4 °C保存。接种前每10 ml培养基添加0.1 ml。
2)林可霉素
在厌氧手套箱中将20 mg盐酸林可霉素溶解于10 ml厌氧稀释液中，用0.22µm无菌滤器过滤进入亨氏管，4 °C保存。接种前每10 ml培养基添加0.1 ml。
3)万古霉素
在厌氧手套箱中将20 mg盐酸万古霉素溶解于10 ml厌氧稀释液中，用0.22 µm无菌滤器过滤进入亨氏管，4 °C保存。接种前每10 ml培养基添加0.1 ml。
8.二甲亚砜
将5 ml二甲亚砜用注射器注入含有4.8 ml无菌厌氧稀释液的亨氏管中，再加入0.2 ml还原剂，室温保存。
9.甘油
在厌氧手套箱中将50 ml甘油与48 ml厌氧稀释液混合，再加入2 ml还原剂，混合均匀，分装到10 ml青霉素瓶中，每瓶装3 ml，异丁烯塞封口，铝盖固定，高压灭菌 (121 °C，15 min)，室温保存。
10.辅酶M
将0.4 g辅酶M溶于100 ml去离子水中，4 °C保存。1 L培养基中加辅酶M溶液10 ml。
11.脂肪酸溶液
乙酸 6.85 ml
丙酸 3.0 ml
丁酸 1.84 ml
2-甲基丁酸 0.55 ml
异丁酸 0.47 ml
戊酸 0.55 ml
异戊酸 0.55 ml
溶于700 ml 0.2 mol/L的氢氧化钠溶液中，用1 mol/L的氢氧化钠调pH至7.5，定容至1,000 ml，4 °C保存。1 L培养基中添加脂肪酸溶液50 ml。
12.底物
瘤胃中甲烷短杆菌主要利用氢气还原二氧化碳生成甲烷，有的种还可以利用甲酸；甲烷球形菌利用氢气还原甲醇生成甲烷；Methanomassiliicoccales目中的甲烷菌主要利用氢气还原甲醇、一甲胺、二甲胺和三甲胺生成甲烷。一般情况下，在亨氏管中充氢气80 KPa和二氧化碳20 KPa培养甲烷短杆菌等氢营养型甲烷菌，也可添加0.5% (w/v)的甲酸钠作为底物；充氢气100 KPa，添加甲醇60 mmol/L (终浓度) 培养甲烷球形菌；充氢气100 KPa，添加甲醇或一甲胺、二甲胺、三甲胺 (终浓度分别为60 mmol/L、60 mmol/L、30 mmol/L、20 mmol/L)培养Methanomassiliicoccales目中甲基营养型甲烷菌。
在厌氧手套箱中用厌氧稀释液制备甲烷菌底物母液，6 mol/L甲醇、6 mol/L一甲胺盐酸盐、3 mol/L二甲胺盐酸盐和2 mol/L三甲胺盐酸盐溶液，用0.22 µm无菌滤器过滤进入已灭菌的厌氧亨氏管，4 °C保存。接种前每10 ml培养基添加0.1 ml底物母液。
13.培养基
85 ml溶液A
85 ml溶液B
2.5 g 碳酸氢钠
0.5 ml刃天青溶液 (0.1% w/v)
酵母膏0.5 g
无细胞瘤胃液150 ml
微量元素溶液5 ml
180 ml去离子
混合于500 ml高压瓶中，置于微波炉中煮沸2 min，然后迅速通入二氧化碳(1.5h~2h)，冷却至室温，用5 mol/L 氢氧化钠溶液调节pH值至6.8，添加0.25 g半胱氨酸盐酸盐，混合均匀，盖紧瓶盖，转移至厌氧手套箱中分装(或者在通二氧化碳的条件下分装)，每支亨氏管分装9 ml，盖上塞子，高压灭菌 (121 °C，15 min)。使用前每支管加维生素溶液0.1 ml。
注：根据培养的甲烷菌不同可以补充添加辅酶M和脂肪酸溶液以及胰蛋白胨0.5 g。
14.厌氧琼脂培养基的制备
在每支亨氏管中加入0.075 g琼脂粉，将加有琼脂的亨氏管放入厌氧手套箱中24 h除氧气，或向管内通二氧化碳除氧气，每支管分装4.3 ml已制备好的液体培养基，加盖，高压灭菌 (121 °C，15 min)。接种菌液、维生素等溶液后琼脂的终浓度为1.5%。
致谢
本项目由国家自然科学基金项目 (31872381) 资助。
参考文献
1.Hungate, R. E. (1969). A roll-tube method for cultivation of strict anaerobes. Methods Microbiol 3: 117-132.
2.Joblin, K. (2005). Methanogenic archaea. In: Methods in Gut Microbial Ecology for Ruminants. Makkar, H. P. S. and McSweeney, C. S. (Eds.). IAEA, Netherlands. pp 47-53.
3.Whitman, W. B., Bowen, T. L. and Boone, D. R. (2006). The Methanogenic Bacteria. In: Prokaryotes. 3: 165-207.
4.Wright, A. D. G., Williams, A. J., Winder, B., Christophersen, C., Rodgers, S. and Smith, K. (2004) Molecular diversity of rumen methanogens from sheep in Western Australia. Appl Environ Microbiol 70(3):1263-70.