找个motif嘛,简单
上午在朋友圈看到有公众号点名:
好不容易有人搞个公众号活动,就支持一下,毕竟生信技能,都在技能树啊~
原文见:画泡泡图,发CNS
虽然今天整体都在开会ing,但还是抽空上午跑了个程序,晚上出结果,再花30分钟写这个教程,完美!
我在生信菜鸟团发布的自学CHIP-seq分析第八讲就提到过如何寻找motif,motif是比较有特征的短序列,会多次出现的,一般认为它的生物学意义重大,做完CHIP-seq分析之后,一般都会寻找motif 。查找有两种:
一是de novo的,要求的输入文件的fasta序列,一般是根据peak的区域的坐标提取好序列
二是依赖于数据库的搜寻匹配,很多课题组会将现有的ChIP-seq数据进行整合,提供更全面,更准确的motif数据库。
motif的英文定义如下:
motif: recurring pattern. eg, sequence motif, structure motif or network motif
DNA sequence motif: short, recurring patterns in DNA that are presumed to have a biological function.
从上边的定义可以看出,其实motif这个单词就是形容一种反复出现的模式,而序列motif往往是DNA上的反复出现的模式,并被假设拥有生物学功能。而且,经常是一些具有序列特异性的蛋白的结合位点(如,转录因子)或者是涉及到重要生物过程的(如,RNA 起始,RNA 终止, RNA 剪切等等)。
一篇文献列出了2014年以前的近乎所有知名的A survey of motif finding Web tools for detecting binding site motifs in ChIP-Seq data 链接见:https://biologydirect.biomedcentral.com/articles/10.1186/1745-6150-9-4
当然,扯这么多大道理,没用。
直接上实战!
说大事专用分割线~
input是找到的peaks文件,bed格式
上游分析这里略过,我的GitHub里面给了全套流程代码:https://github.com/jmzeng1314/NGS-pipeline/tree/master/CHIPseq
反正得到了bed格式的peaks文件,而且一般下载公共数据在GEO里面作者都会顺带上传他们做好的peaks文件,比如:https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE66581 就可以下载ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/geo/series/GSE66nnn/GSE66581/suppl/GSE66581_bed_files.tar.gz 文件。
因为是下载作者的数据,所以必须注意;参考基因组版本是:Genome_build: mm9
最常用的是 MEME工具套件 :
http://meme-suite.org/ 输入文件是fasta序列,需要对peaks进行转换,根据bed的基因坐标从基因组里面提取对应的序列咯: http://bedtools.readthedocs.io/en/latest/content/tools/getfasta.html
它里面集成了4个寻找motif 的工具,每个工具都是一篇文章,里面有详细描述具体原理,但是整个网页给人的感觉是too busy,让初学者无从下手,这次讲解就略过它咯。
homer软件来寻找motif
这个软件安装当初特别麻烦: https://github.com/jmzeng1314/NGS-pipeline/blob/master/CHIPseq/step8-Homer-findMotif.sh
但是现在有了conda,一句话搞定:conda install -c bioconda homer
,值得提醒的是,如果是在中国大陆,那么需要设置一下:
# https://repo.continuum.io/miniconda/Miniconda2-latest-Linux-x86_64.sh
conda config --add channels https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/anaconda/pkgs/free
conda config --add channels https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/anaconda/cloud/conda-forge
conda config --add channels https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/anaconda/cloud/bioconda
conda config --set show_channel_urls yes
conda config --show
下载软件及数据
conda install -y -c https://mirrors.tuna.tsinghua.edu.cn/anaconda/cloud/bioconda homer
perl ~/miniconda2/share/homer-4.9.1-5/configureHomer.pl -install mm9
ls -lh ~/miniconda2/share/homer-4.9.1-5/data/
## 作者使用的是mm9找到的peaks文件
## 数据库下载取决于网速咯
## 下载成功后会多出 ~/miniconda2/share/homer-4.9.1-5/data/genomes/mm9/ 文件夹, 共 4.8G
## 这个文件夹取决于你把homer这个软件安装到了什么地方。
## 或者用下面代码安装:
cd ~/biosoft
mkdir homer && cd homer
wget http://homer.salk.edu/homer/configureHomer.pl
perl configureHomer.pl -install
perl configureHomer.pl -install hg19
## 软件安装之后就下载peaks文件,肯定是bed格式的
mkdir ~/motif
cd ~/motif
wget ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/geo/series/GSE66nnn/GSE66581/suppl/GSE66581_bed_files.tar.gz
tar zxvf GSE66581_bed_files.tar.gz
下载得到的bed格式的peaks文件如下:
motif/
|-- [3.4M] 1k_es_peaks.bed
|-- [2.5M] 200_es_peaks.bed
|-- [780K] 2cell_early_peaks.bed
|-- [415K] 2cell_early_trx_inhibitor_peaks.bed
|-- [2.3M] 2cell_peaks.bed
|-- [1.7M] 4cell_dba_peaks.bed
|-- [2.2M] 4cell_peaks.bed
|-- [2.1M] 50k_es_peaks.bed
|-- [1.9M] 8cell_peaks.bed
|-- [5.9M] GSE66581_bed_files.tar.gz
`-- [1.4M] icm_peaks.bed
homer软件找motif整合了两个方法,包括依赖于数据库的查询,和de novo的推断。
运行homer软件
但是使用起来很简单:http://homer.ucsd.edu/homer/ngs/peakMotifs.html
for id in *_peaks.bed;
do
echo $id
awk '{print $4"\t"$1"\t"$2"\t"$3"\t+"}' $id >homer_peaks.tmp
findMotifsGenome.pl homer_peaks.tmp mm9 ${id%%.*}_motifDir -len 8,10,12
annotatePeaks.pl homer_peaks.tmp mm9 1>${id%%.*}.peakAnn.xls 2>${id%%.*}.annLog.txt
done
不仅仅找了motif,还顺便把peaks注释了一下。
然后为了出图,我还需要解析这个结果,把需要的基因的motif数据抓出来
也是非常简单,只需要对每个peaks注释结果的 knownResults.txt grep即可。
接下来,就看Y叔表现咯。
整个流程我是我的云服务器操作的,其中homer软件+mm9数据库约5G,下载的peaks及注释后的文件不到200M,软件安装及数据库下载,数据下载,注释,找motif的代码都给了,如果你想实践一下,可以考虑购买我的云服务器, 99 元一个月,不仅仅是找motif,更多详情请访问: 古有杨志卖刀,今有jimmy售器
其它资源
还有一些R包可以,直接从BED文件里面记录的基因坐标来找motif,有的需要输入fasta序列,就需要自己根据bed的基因坐标从基因组里面提取对应的序列咯:
rGADEM (motif discovery): http://bioconductor.org/packages/devel/bioc/html/rGADEM.html
MotIV (motif validation): http://bioconductor.org/packages/devel/bioc/html/MotIV.html
http://lgsun.grc.nia.nih.gov/CisFinder/
http://bioinfo.cs.technion.ac.il/drim/