小麦抗蠕孢叶枯病(spot blotch)基因Sb2
小麦病害的种类很多,其中叶部病害除以往危害较重的条锈病、叶锈病和白粉病等之外,近年来小麦叶枯病从原来的点片发生已经发展到较大地区范围,且危害逐年加重,在部分地区成为常发和重要病害。小麦叶枯病是引起小麦叶斑和叶枯类病害的总称,全世界报道的叶枯病的病原菌达20多种,常见的有褐斑病(Tan spot)、蠕孢叶枯病(Spot blotch)、壳针孢叶枯病(Septoria tritici blotch,STB)和颖枯病(Septoria nodorum blotch,SNB)等。我国目前已鉴定到的病原菌有10多种,以雪霉叶枯病、蠕孢叶枯病、链格孢叶枯病、壳针孢类叶枯病等危害较大。小麦感染叶枯病病菌后常造成叶片早枯,严重影响籽粒灌浆造成穗粒数减少,千粒重下降,有些叶枯病原菌还可引起籽粒的黑胚和根部腐烂,降低小麦产量和小麦商品粮等级。
蠕孢叶枯病的致病菌为内脐蠕孢属(Pyrenophora tritici-repentis, Tan spot)和平脐蠕孢属(B. sorokiniana, Spot blotch)的多种真菌,我国南北麦区都有分布,尤以东北、西北春小麦受害最重,黄淮流域冬麦发生也很普遍。雪霉叶枯病致病菌为有性态的Monographella nivalis和无性态的Microdochium nivale, 黄淮和长江流域以及新疆、西藏都有发生,低湿多雨地区流行频率尤高。链格孢菌叶枯病致病菌包括Alternaria triticina和A. alternata,是近年发现的恶性叶枯病,已知发生于黄淮流域各省。壳针孢类叶枯病致病菌为Septoria tritici blotch (Zymoseptoria tritici)和Parastagonospora nodorum (Septoria nodorum blotch),主要危害区域为东北晚熟春麦区和西北局部冷凉阴湿地区。近年小麦叶枯病在我国黄淮小麦主产区和东北春麦区危害日益严重,对小麦生产造成了严重的影响。
小麦蠕孢叶枯病(Spot blotch)是由平脐蠕孢菌(Bipolaris sorokiniana)侵染引起的真菌性病害,在全世界的小麦主产区均有发生,在南美、南亚等国家危害较重。我国以西南、东北、黄淮南片和长江流域有不同程度的危害,近年随着耕作制度的变革,田间病原菌量增加,其它麦区有加重的趋势。绿色革命后,伴随矮秆与半矮秆小麦的推广和全球气候变暖的趋势,小麦蠕孢叶枯病的发病也渐趋频繁,对小麦产量和品质造成严重威胁。
图1 小麦叶枯病的田间表现
从Yangmai 6×Sonalika的重组自交系中选择株型和生育期与Sonalika高度相近且仅含有5BL上的QTL位点的F12代抗病RIL家系YS116与感病亲本Sonalika杂交,进一步获得F3、F4和F5衍生家系,用于5BL染色体上QTL位点的遗传解析。发现在该群体中抗病性分离比例符合单基因的孟德尔遗传定律,因此将该位点命名为Sb2(Kumar et al., 2015a)。进一步利用位于5BL染色体上的64个SSR标记(包括57个GWM和7个BARC标记)在YS116和Sonalika间筛选多态性,发现14个SSR标记在亲本间存在多态性,经在335个F4代RIL群体上对多态性的分子标记与表型进行连锁关系验证,构建了Sb2基因遗传连锁图谱,Sb2被定位于分子标记Xgwm639与Xgwm1043 之间0.62 cM 遗传区间(图2),对F5代RIL群体的分析验证了两个分子标记与Sb2的遗传距离分别为0.4 cM和0.44 cM(Kumar et al., 2015b)。
图2 小麦抗叶枯病基因Sb2的遗传连锁图谱间表现(Kumar et al., 2015b)
研究人员还利用标记Xgwm1043对65个已知叶枯病表型的印度品种进行了等位变异分析,发现其中48个品种(包括抗病34个,中度感病8个,高感6个)中携带有抗病位点的SSR等位基因,而在其余的7个品种(抗病4个和中感3个)中未检测到抗病SSR等位基因。而利用标记Xgwm1043对16个易感品种进行检测时,发现6个携带有抗病相关的SSR等位基因的品种,其余10个易感品系中没有检测出SSR等位基因,推测这些品种中可能存在别的抗病位点。说明利用分子标记Xgwm639与Xgwm1043可以进行抗叶枯病基因Sb2的分子辅助选择育种(Kumar et al., 2015b)。
主要参考文献
Kumar U, Joshi AK, Kumar S, Chand R, Röder MS. (2009) Mapping of resistance to spot blotch disease caused by Bipolaris sorokiniana in spring wheat. Theor. Appl.Genet. 118:783–792.
Kumar S, Tripathi SB, Kumar U. (2015a) Dissection of wheat spot blotch disease resistance QTLs into single Mendelian genes. Indian J Genet. 75(4):434–439
Kumar S, Röder MS, Tripathi SB, Kumar S, Chand R, Joshi AK, Kumar U. (2015b) Mendelization and fine mapping of a bread wheat spot blotch disease resistance QTL. Mol Breed. 35:1-10
He X, Dreisigacker S, Sansaloni C, Duveillier E, Singh RP, Singh PK. (2017) QTL mapping for spot blotch resistance in two bi-parental mapping populations of bread wheat. In: Buerstmayr H, Lang-Mladek C,Steiner B, Michel S, Buerstmayr M, Lemmens M, Vollmann J, Grausgruber H (eds) Proceedings of the 13th International Wheat Genetics Symposium, Tulln, Austria, p 288
Lillemo M, Joshi AK, Prasad R, ChandR, Singh RP (2013) QTL for spot blotch resistance in bread wheat line Saarco-locate to the biotrophic disease resistance loci Lr34 and Lr46. Theor Appl Genet 126:711-719.