Genie带你认识细胞周期

细胞周期(cell cycle)是指细胞从一次分裂完成开始到下一次分裂结束所经历的全过程,在这一过程中细胞的遗传物质复制病均等地分配到两个子细胞中。细胞周期一般分为5个阶段:G0(静止期)、G1期(DNA合成前期)、G2期(DNA合成期)、G2期(DNA合成后期)和M期(分裂间期),如果根据DNA数量来区分的话可以分为G0/G1期、S期和G2/M期。

细胞周期检测方法

流式细胞术是一种对液流中排成单列的细胞或其它生物微粒(如微球, 细菌, 小型模式生物等) 逐个进行快速定量分析和分选的技术,经单克隆荧光抗体或者核酸特异性染料对细胞进行染色后,通过FCM可以分析细胞的一系列参数。PI(碘化丙啶)为插入性核酸荧光染料,能选择性的嵌入核酸DNA和RNA双链螺旋的碱基之间与之结合,其结合的量与DNA的含量成正比例关系。通过对所有细胞进行染色,那些准备分裂的细胞将含有越来越多的DNA,并显示出比例增加的荧光,利用流式细胞术来检测荧光含量进而确定各个阶段细胞的百分比。需要注意的是由于PI染料不能进入活细胞,所以在染色前经常会用乙醇对细胞进行固定,另外PI也会结合RNA,进而对实验结果造成影响,所以需要额外加入RNA酶。

实验流程(以碘化丙啶PI为例)

细胞固定:300g离心5min后,弃上清收集细胞沉淀。用预冷的PBS洗涤2次后弃上清,逐滴加入-20℃预冷的70%乙醇,一边加一边摇匀。最后置于4℃下固定至少30min(固定时间建议做预实验进行优化)。

细胞染色:300g离心5min后弃上清,用2ml的PBS洗涤2次(注意避免Dnase污染),加入适量的PI染料(1mg/ml)和Rnase(2mg/ml),室温避光孵育15min。

上机前过滤:PI具有很强的粘附性,容易形成细胞聚团,建议可以使用200目的筛网过滤样本后上机

上机检测:低速上样,建议有效的单个细胞采集10000个以上。

实验注意事项

1. 一定要用纯水配置70%乙醇,PBS有盐析出会对细胞造成物理性伤害。

2. 与抗体抗原结合不同,核酸染料与DNA的结合是一种结合状态和游离状态之间的松散平衡,并不牢固,因此离心洗涤会破坏PI的结合,造成荧光强度下降,因此染料孵育完之后不要进行细胞清洗。

3. 上机时,荧光通道设置为线性(lin)放大。

4. 需要排除粘连体(使用A,H和W其中两个参数)。

5. 上样浓度设置在5*10^5-1*10^6,进样速度为低速,样本在1h内上机,否则CV值会增加。

6. 对于有GFP的细胞,乙醇处理容易导致GFP破膜后溢出,可以先用0.5%多聚甲醛固定15min之后再用乙醇固定。

7. 在加入乙醇过程中如果出现了絮状物,则说明细胞状态差,或者制备过程中出现了细胞损伤,有DNA释放缠绕细胞,造成团块,需要重新制备样本。

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SKin C1是一种小分子抑制剂,对3T3细胞系进行处理后会延长G2/M期的比例,降低G1期的细胞比例。本次实验在3T3细胞培养体系中加入20uM的SKin C1的小分子抑制剂培养24h后收集细胞,检测细胞周期各个阶段的细胞比例,与对照组(图A)相比,实验组(图B)的G2/M期的细胞比例增加,G1期的细胞比例出现降低。

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