生化检测样本收集及寄送注意事项

生化检测主要的样本类型可以分为血液样本、组织样本和细胞样本。

1.    血液样本的收集：

全血根据收集的条件，分成不抗凝和抗凝两种。同时，不抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血清；抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血浆。

（1）不抗凝收集血清:将收集好的全血,静置1～2小时，直接低速离心分离出血清待用或保存。

（2） 抗凝收集血浆:收集抗凝全血，轻轻颠倒充分抗凝后，可直接低速离心分离血浆(也可静置半小时左右再低速离心分离血浆)待用或保存。根据不同抗凝剂的性能特征，选择合适的抗凝剂。实验室常用的抗凝剂有肝素的各种盐、EDTA及枸橼酸钠。生化实验一般建议用肝素抗凝。

选择抗凝的注意点：

（1） 每一份样本所加的抗凝剂的量要一致，同时所取的全血的量也要尽量一致；

（2） 收集抗凝全血后一定要轻轻颠倒，充分抗凝，防止部分血液未接触到抗凝剂而导致凝固；

（3） 抗凝全血收集的血浆相对较多（1ml抗凝全血能分离出0.4～0.5ml血浆）；

（4） 抗凝收集的血浆冷冻保存后，解冻时可能会出现絮状浑浊，如有则需要离心去掉浑浊后用于测定。

2.    组织样本的收集：

（1） 样本采集：取组织块（一般每种组织需0.2g以上）在冰冷的生理盐水中漂洗，除去血液，滤纸拭干，准确称重，放入冻存管或离心管中。

（2）样本保存：动物组织样本暂时不测定，可立即低温冻存，温度越低越好，中间如不反复冻融，-20℃以下可保存三个月,-70℃以下可保存六个月。

3.    细胞样本的收集：

细胞沉淀的收集：

（1） 悬浮细胞：对于悬浮培养的细胞，直接通过离心收集细胞沉淀，将培养液在室温条件下1000转/分,离心10分钟，弃上清留细胞沉淀。

（2） 贴壁细胞：对于贴壁培养的细胞，用胰酶将细胞消化下来，或用细胞刮将细胞刮下来，将培养液在室温条件下1000转/分,离心10分钟，弃上清留细胞沉淀。

细胞培养液的收集：

收集细胞培养液，将培养液在室温条件下1000转/分,离心10分钟，吸取上清至新的EP管中冻存。

4.    样本的运输、转存

样本收集齐后-80℃冻存，将冻存的标本，放置在装有5-10公斤干冰的泡沫盒中密封保存运输。（干冰保证-40℃的温度，防止样本的反复冻融，5-10公斤的干冰可以保证5-7天的温度）。