万字干货,关于PCR基因扩增仪的一切
今天小谱就其发展史、检测原理、结构和大家进行探讨,让基因扩增仪变的更简单。
(如果读完文章您觉得还有哪些想听的知识点小谱没有讲到,亦或是觉得小谱文章中有哪些观点您不太认同,欢迎您积极留言。)
核酸体外扩增的设想最早是由Khorana在1971年提出的。“经DNA变性,与合适的引物杂交,用DNA聚合酶延伸引物,并不断重复该过程便可合成tRNA基因。”
然而当时还没有成熟的基因序列分析方法,也没有热稳定DNA聚合酶以及引物合成操作很困难。这种设想达不到实际的效果。并且在70年代初出现了分子克隆技术,一种克隆和扩增基因的途径被提供了,因此人们遗忘了Khorana的设想。
1983年4月的一个星期五晚上,Kary Mullis开车去乡下别墅的路上,猛然闪现出“多聚酶链式反应”的想法;
1983年12月,Mullis用同位素标记法看到了10个循环后的49 bp长度的diyi个PCR片段;
1985年,Mullis在Cetus公司工作期间,发明了PCR。Mullis要合成DNA引物来进行测序工作,却常为没有足够多的模板DNA而烦恼;
1985年10月25日申请了PCR的专利,1987年7月28日批准(专利号4,683,202 ),Mullis是diyi发明人;
1985年12月20日在Science杂志上发表了diyi篇PCR的学术论文,Mullis是共同作者;
1986年5月,Mullis在冷泉港实验室做专题报告,全世界从此开始学习PCR的方法。
根据PCR原理,商业公司在PCR仪的基础功能上不断进行创新和改进。至今,PCR仪已经更新至第三代技术。为方便读者朋友理解,本文将对三代PCR仪的原理、特点、主要厂商及产品、应用领域做一系统梳理。
第一代——标准PCR仪
▲ 标准PCR反应过程
第三代——dPCR(数字PCR)
不同于qPCR 对每个循环进行实时荧光测定的方法,数字 PCR 技术是在扩增结束后对每个反应单元的荧光信号进行采集。
数字PCR是一种基于PCR反应(聚合酶链反应)的单分子绝对定量技术。如图1,在数字PCR的过程中:
(a) PCR反应体系(含有荧光染料或探针)被分割为数以万计的均一微液滴,
(b) 其中部分微液滴内会含有一个或多个模板,
(c) 将这些微液滴收集到试管内进行PCR反应,其中含有模板的微液滴会产生扩增产物,由此具有较强的荧光,成为阳性微液滴,
(d) 在PCR反应完成后,依次对每个微液滴内的荧光进行检测,
(e) 根据微液滴信号的峰值高度,绘制出微液滴荧光分布的散点图,
(f) 通过合理的荧光分类阈值将微液滴内的荧光强度数字化,判断出其中具有较强荧光的阳性微液滴(图1f中绿色的数据点,称为“1”)和具有较弱荧光的阴性微液滴(图1f中蓝色的数据点,称为“0”),并通过“1”和“0”的个数来实现绝对定量。因此,与实时定量PCR不同,数字PCR不需要使用标准曲线,即可直接对核酸拷贝数的绝对值进行定量。
▲ 数字PCR原理示意图
最后通过直接计数或泊松分布公式计算得到样品的原始浓度或含量。
迄今为止,目前市面上常见的数字PCR仪器主要有两种,根据微反应的形成原理不同,主要分为 “芯片数字PCR”与“微滴数字PCR”两类。
1.芯片数字PCR
▲ 芯片数字PCR原理图
2.液滴数字PCR
▲ 微液滴数字PCR原理图
基因扩增的基本要素与DNA复制的基本要素是一致的。
①DNA模板:待拷贝的DNA称为模板,它可以是双链DNA也可是单链DNA,Z后扩增得到的产物是双链状态的。
②引物:是DNA复制的先锋,就象结晶过程中的晶核,引导DNA的合成。在PCR扩增中一般使用合成的寡核苷酸作引物。
③DNA聚合酶(TaqDNA聚合酶):是DNA复制的动力,在dNTP等底物存在时在引物的引导下沿着模板DNA合成互补的DNA链。
④缓冲液:提供DNA合成反应所需的pH,离子强度等环境。
⑤4种单核苷酸:dNTP,提供DNA合成原料。
基因扩增仪是利用PCR技术对特定基因做体外的大量合成,用于以检测DNA/RNA为目的的各种基因分析。
PCR反应一般设置20~40次循环,每一循环包括高温变性、低温退火、中温延伸三步反应。每一循环的产物作为下一个循环的模板。PCR的扩增效率很高,如果循环次数是30次,那么新生DNA片段理论上达到230拷贝(约为109个分子)。PCR反应每个循环的三个基本反应步骤如下:
①模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA产物解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;
②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合;
③引物的延伸:温度升到72℃左右,DNA模板-引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制原理,合成一条新的与模板DNA链互补的半保留复制链。重复循环变性-退火-延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链”,而且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~4分钟,2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。到达平台期所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。
荧光定量PCR仪操作规程
1.开始运行仪器
将PCR仪底座开关打开,再将定量PCR仪检测器开关打开。在实验之前,首先对系统预热半个小时,打开电脑,将iQ5软件启动。
5.关闭运行仪器
实验结束后将iQ5软件、荧光定量检测器及扩增系统电源关闭,将电脑关闭,将反应管取出。
常见问题
尽管PCR仪器不是计量仪器,然而其的作用原理和基本计量要素有很密切的关系,因此,PCR仪需要定期检测和维护。
仪器的维护保养
1.样品池的清洗
首先将盖子打开,然后在样品池加入95%乙醇或10%清洗液,浸泡5min,然后对被污染的孔进行清洗,使用微量移液器对液体进行吸取,使用棉签将剩余液体吸干。打开PCR仪,设定保持温度为50℃使PCR程序运行,挥发去除残余液体,通常只需要5-10分钟左右。
2.热盖的清洗
对于荧光定量PCR仪,若出现荧光污染,并且样品池不是这一污染的来源,或者当热盖的松紧受到污染或残迹物的影响时,垫盖底面需要用压缩空气或纯水清洗,使样品池的孔干净,无污物阻挡光路得到保证。
3.仪器外表面的清洗
对仪器的外表面进行清洗能够使灰尘和油脂除去,然而不能达到消毒的效果,对PCR仪的外表面进行清洗Z好选择没有腐蚀性的清洗剂。
4.更换保险丝
首先关掉PCR仪,将插头拔取,将电源插口旁边的保险盒打开,将备用的保险丝换上,观察是否恢复正常。
仪器的维护和保养的注意事项
1)PCR仪器需要视制冷方式而定通常进行半年至少一次定期检测。
2)PCR反应的要求温度与实际分布的反应温度不相同,如果通过检测,与设置温度相比较,各孔平均温度差超过1~2℃,那么可以对PCR实际反应温度差运用温度修正法来纠正。
3)升、降温过程的时间控制是PCR反应过程的关键时间越短越好,如果PCR仪的降温过程高于1分钟,那么就应该对仪器的制冷系统进行检查。当PCR仪是使用风冷制冷时,其反应底座的灰尘要较彻底地清理,若是其他的制冷系统,那么应该对相关的制冷部件进行检查。
4)通常情况下,如果仪器的温度能够采用温度修正法纠正,那么不要轻易地对仪器的电子控制部件打开或调整。
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