Co-IP 实验Q&A宝典
背景
要点
裂解翻转于低温,避免降解是根本。
抗体珠子需加足,抗体蛋白过夜孵。
蛋白丰度了于心,重链轻链已变性。
Protocol与datasheet,研读操作需仔细。
常见问题解析
01
免疫共沉淀(Co-IP)与免疫沉淀(IP)的区别
IP
Co-IP
IP:通过对某蛋白质的富集,研究该蛋白的特性(如翻译后修饰)。
Co-IP: 通过对某蛋白质的富集,研究与其结合的其他蛋白(即蛋白-蛋白相互作用、蛋白复合物等)。
▶ 关键试剂选择:使用可以富集蛋白的抗体是Co-IP的前提,因此,适用于IP的抗体都可应用于Co-IP。
02
Co-IP与Gst pull-down的区别
Co-IP:利用抗原抗体反应的特异性;
GST Pull down:一般指用一个带GST标签的重组蛋白,与目的蛋白进行孵育,最后用结合GST的Beads拉下相互作用复合物。
03
免疫共沉淀中的input是指什么?阴性对照的意义是什么?
input是阳性对照。免疫共沉淀实验中,会直接取细胞裂解液进行WB,用于验证细胞裂解液中确实存在目的蛋白。阴性对照是用来排出污染的可能性, 当阴性对照(即lgG对照)没有出现阳性说明没有非特异性的蛋白,当对照出现阳性,说明抗体有非特异结合的可能。
04
免疫共沉淀中ProteinA/G琼脂糖珠有何作用?
ProteinA/G能特异性地结合到免疫球蛋白的FC片段,因此能和抗体结合,而抗体与目标蛋白结合,目标蛋白和相互作用的蛋白结合。
05
Co-IP实验中如何去除重链轻链的影响?
1. 靶标蛋白与抗体重链(55kD)、轻链(25kD)分子量差别很大 ;
2. IP抗体:将IP抗体固定于磁珠上 ;
3. WB抗体:IP捕获抗体(如鼠源)与WB检测一抗(如兔源)选用不同种属来源的抗体(初级方案);
4. 特殊二抗:传统二抗可识别变性的重轻链, 而 Protein A/G-HRP 二抗仅结合完整的IgG。
18-160 | Protein A, HRP conjugate
18-161 | Protein G, HRP conjugate
特殊二抗:链型特异或构象特异的二抗。用抗Fab和 Fc 抗体特异性封闭轻链和重链。
06
Co-IP实验两个抗体需要不同种源吗?
最好选择两个不同种源的抗体。选择同一种源的抗体的问题在于:在WB之前进行的蛋白变性这一步,由于加样缓冲液中含有巯基乙醇,巯基乙醇会把抗体的重链和轻链间的二硫键破坏, 从而使抗体变成重链分子55KD和轻链分子25KD, 如果目的蛋白在55KD或25KD附近,则IP抗体的重链或轻链和目的蛋白会重叠在一起,无法分辨。
07
进行IP反应时,抗体、磁珠的加样和反应顺序会对最终结果有影响吗?
一般有三种反应顺序:
1.样本+抗体先反应,然后加磁珠;
2.抗体+磁珠先反应,然后放入样本中;
3.样本+抗体+磁珠同时反应。
推荐使用第一种和第二种,差别不大。不推荐用第三种,第三种方式虽然可以减少反应时间,但有实验表明同时加入三个组分的方式会使最终的结果变差。
Trouble shooting
高背景
制备样品中可能有不完全溶解的大的蛋白复合体
▶ 制备样品后进行短暂超声处理(3次,每次5秒钟),然后离心纯化,取上清后进行后续试验
洗涤不彻底
▶ 多次洗涤,并逐渐增加洗涤缓冲液中的NaCl和去垢剂浓度
非特异性蛋白吸附于珠子上
▶ 进行Preclearing以排除非特异性吸附
抗体本身特异性不好
▶ 选择合适的抗体,可以考虑单抗
使用了太多的抗体
▶ 进行条件优化减少抗体
使用了过多的细胞或组织进行裂解
▶ 减少样本量,我们推荐100-500μg细胞裂解物
抗原降解
▶ 保证样品中加入了蛋白酶/磷酸酶抑制剂,尽量使用新鲜制备的样品
WB步骤
▶ 使用规范的WB,注意封闭、一二抗稀释的条件
无信号
目的蛋白在样本中表达量低或者不表达
▶ 首先对目的蛋白表达量进行检测,或者加大IP中加入的蛋白裂解物并进行预处理。
▶ 胞内蛋白互作的水平较低或没有互作,增加蛋白裂解物或进行诱导处理。
细胞裂解液使用不当
▶ 根据实验需要选择,慎重考虑。
目的蛋白未被洗脱
▶ 保证使用合适的洗脱液,保证洗脱液的强度和pH值合适。
抗体没有很好的与珠子相互结合
▶ 选择合适的珠子。
抗体选择不当或者不工作
▶ 利用WB对抗体进行验证
抗体使用不足
▶ 查阅文献或者说明书,并多次优化或选择合适的抗体使用量。